Скрининг рака шейки матки: что нового в мировой практике

Байрамова Г.Р., Файзуллин Л.З., Королькова А.И., Полозников А.А., Киселев В.И.

ФГБУ Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. академика В.И. Кулакова Минздрава России, Москва; Федеральный научно-клинический центр детской гематологии, онкологии и иммунологии им. Дмитрия Рогачева, Москва, Россия; Институт медико-биологических проблем ФГБУ ВПО Российский университет дружбы народов, Москва
Цель исследования. Провести систематический анализ данных, имеющихся в современной литературе, о роли различных молекулярно-генетических маркеров канцерогенеза шейки матки наряду с традиционными методами скрининга рака шейки матки.
Материал и методы. В обзор включены данные зарубежных и отечественных статей, найденных в Pubmed по данной теме, опубликованных за последние 5 лет.
Результаты. Описаны основные методы, используемые для скрининга рака шейки матки, а также новые эпигенетические биомаркеры, позволяющие выбрать правильную тактику ведения пациенток в сложных клинических ситуациях.
Заключение. Диагностические биомаркеры (метилирование гена WIF1, экспрессия mir-29b в эпителии шейки матки, р16 и Ki67 и др.) играют определяющую роль в интерпретации окончательного диагноза при спорных и неоднозначных результатах цитологического исследования и ВПЧ-тестирования, что подчеркивает необходимость их дальнейшего исследования.

Ключевые слова

вирус папилломы человека
рак шейки матки
цервикальная интраэпителиальная неоплазия
жидкостная цитология
ВПЧ-тестирование
р16(INK4A)/Ki67 иммуноокрашивание
микрорибонуклеиновая кислота
mir-29b
метилирование гена
экспрессия гена

В последние годы во всем мире внимание исследователей привлечено к проблеме рака шейки матки (РШМ). По данным мировой статистики РШМ занимает второе место среди злокачественных новообразований органов репродуктивной системы, уступая раку молочной железы. Неуклонный рост цервикальной онкопатологии, неблагоприятная тенденция к омоложению болезни тревожна и однозначно свидетельствует о необходимости разработки и внедрения эффективных мероприятий, направленных на профилактику РШМ. Согласно данным HPV Information Centre [1], в мире риск развития РШМ в возрасте 15 лет и старше составляет 2 645 080 случаев, среди них 527 624 женщин с впервые выявленными случаями РШМ.

По прогнозам экспертов, к 2020 г. с учетом роста населения и предполагаемого увеличения продолжительности предстоящей жизни ожидается рост показателей заболеваемости РШМ до 40% в развивающихся странах, тогда как в развитых странах – только до 11%. К 2050 г. около 1 млн женщин без проведенной своевременной профилактики будут подвержены риску развития РШМ [2]. Следует отметить, что в развитых странах заболеваемость РШМ снизилась за последние десятилетия в связи с развитием скрининговых программ. Так, в Финляндии, программа цитологического скрининга была создана в начале 1960-х годов, что позволило снизить заболеваемость РШМ на 80% [3].

Следует отметить, что более 500 000 случаев РШМ в мире вызываются вирусом папилломы человека (ВПЧ). Известно, что при персистенции высокоонкогенных типов ВПЧ (16-го и 18-го типов) риск развития цервикальной интраэпителиальной неоплазии слабой степени (Cervical intraepithelial neoplasia grade I, СIN I), составляет 25,5%, умеренной и тяжелой (CIN II–III) – 51,5%. Персистенция высокоонкогенных типов ВПЧ в течение 2 лет и более является наиболее опасным фактором прогрессии предрака шейки матки.

Интересны результаты проведенных исследований ряда авторов, в которых показано, что в биоптатах больных РШМ в 99,7% случаев выявлены различные типы ВПЧ; более 70% случаев РШМ вызваны 16-м и 18-м типами ВПЧ [4].

За последние 20 лет отмечается четкая тенденция «омоложения» предрака и РШМ, который занимает первое место среди всех онкогинекологических заболеваний у женщин в возрасте до 30 лет. В данной возрастной группе показатель заболеваемости РШМ возрос в 2 раза. Показано, что у женщин в возрасте от 25 до 40 лет инвазивные формы РШМ составляют около 30% [5, 6].

Под термином «скрининг» подразумевают обследование для исключения предраковых заболеваний и рака у женщин, относящихся к группе риска, большинство из которых не имеют симптомов. В настоящее время существуют три основных исследования, используемых для скрининга РШМ:

  • тест по Папаниколау (РАР-тест) или жидкостная цитология (ЖЦ, liquid-based cytology, LBC);
  • тестирование на онкогенные типы ВПЧ (типы 16 и 18 и др.);
  • осмотр шейки матки после обработки раствором уксусной кислоты.

Следует отметить, что вакцинация против ВПЧ не заменяет скрининг РШМ.

До недавнего времени к первичному скринингу РШМ относили цитологический метод исследования (РАР-тест или ЖЦ). Основными преимуществами метода ЖЦ является его высокая специфичность, компьютеризированная система исследования, качество забора, хранения и транспортировки материала. Кроме того, оптимизировано рабочее время цитолога при просмотре цитологических препаратов, что позволяет сохранить все забранные клетки. Важно отметить, что один и тот же образец, взятый для ЖЦ, может быть использован для детекции ВПЧ высокого онкогенного риска и определения онкомаркеров CIN иммуноцитохимическим методом. Вместе с тем, чувствительность цитологического метода недостаточно высока и составляет 60–80%.

Наряду с традиционным цитологическим исследованием (РАР-тест) или ЖЦ, с недавнего времени лидирующую позицию занимает тестирование на наличие ВПЧ-инфекции.

Одним из ведущих экспертов в области исследований, связанных с ВПЧ и РШМ, является профессор, член правления ряда ассоциаций F. Xavier Bosch (Испания, Барселона, Каталонский институт онкологии), считающий, что «ВПЧ – это патоген равных возможностей. Он представляет собой элемент природы человека, хорошо адаптированный к инфицированию эпителия и настолько распространенный, что его можно рассматривать как практически неизбежный. ВПЧ – это настоящий агент, провоцирующий заболевание и в целом является социальной проблемой».

В современных условиях ВПЧ-тест необходимо проводить наряду с цитологическим исследованием, так как он обладает более высокой чувствительностью по сравнению с цитологическим методом, что позволяет с высокой степенью вероятности диагностировать ВПЧ-ассоциированные поражения шейки матки на ранних этапах их развития. По данным ряда исследований в Европе (Sweede screen, POBASCAM, ATISTIC, NTCC), объединивших более 100 000 женщин, было продемонстрировано, что определение ВПЧ (использовались тест-системы различных производителей) может дать более точную информацию по сравнению с цитологическим методом [7].

Сравнительно недавно FDA (Food and Drug Administration, США) одобрил ВПЧ-тест для использования в качестве первичного скрининга РШМ. Однако имеются расхождения в применении ВПЧ-теста в руководствах различных стран мира [8]. Так, в Европейских рекомендациях ВПЧ-тест используется: для выявления у женщин ASC-US (Atypical squamous cells undertermined significance); для наблюдения после лечения CIN; в качестве основного скринингового теста, но автономно, то есть без цитологического исследования. Некоторые страны, например Австралия и Нидерланды, уже достаточно давно приняли первичный скрининг на ВПЧ для своих национальных скрининговых программ. Первичный скрининг на ВПЧ может снизить как сложность, так и затраты, которые присущи ко-тесту (скрининг на ВПЧ + цитологическое исследование), при этом сохраняется высокая чувствительность метода [9].

В Австралии в 2017 г. предполагается внедрение скрининговой программы, в которую будут включены женщины как вакцинированные, так и не вакцинированные, в возрасте от 25 до 69 лет, которым будут проводить тест на ВПЧ с определением типа вируса и ЖЦ 1 раз в 5 лет, а женщинам в возрасте до 74 лет – тест на ВПЧ [10].

Правомочен вопрос: с какого возраста целесообразно проведение ВПЧ-тестирования? На этот счет данные мировой литературы неоднозначны. По данным ряда авторов, ВПЧ-тестирование целесообразно проводить женщинам начиная с 25-летнего возраста [11–13]. Данные других исследователей свидетельствуют, что ВПЧ-тестирование является основным методом проведения первичного скрининга у женщин в возрасте старше 30 лет [3, 14]. Следует отметить, что тестирование на ВПЧ не проводят в более раннем возрасте. Это связано, с одной стороны, с возможностью регресса папилломавирусной инфекции, с другой – с минимальным риском прогрессирования и развития РШМ у данного контингента женщин. Поэтому во многих странах мира считается, что проведение ВПЧ-тестирования у женщин до 25 лет является экономически необоснованным и не может служить средством скрининга или инструментом определения тактики ведения пациентки [15].

Исследования A.J. Blatt и соавт. (2015) продемонстрировали приоритет ко-теста (цитологического исследования в сочетании с ВПЧ-тестом) по сравнению с проведением только цитологического или только ВПЧ-тестирования. Было показано, что среди 256 648 женщин в возрасте 30–65 лет, включенных в исследование, использование ко-теста выявило CIN III+ в 98,8% случаях, что было подтверждено данными гистологического исследования. Использование только PAP-теста или ВПЧ-теста позволило выявить CIN III в 91,3 и 94% случаях соответственно [16]. Данные других авторов показали, что проведение ко-теста позволяет на более ранних этапах выявлять ASC-H (Atypical squamous cells cannot exclude HSIL, High grade squamous intraepithelial lesion) и прогнозировать риск развития CIN [8].Таким образом, ко-тест (до проведения кольпоскопии) позволяет выявить когорту женщин с риском развития CIN.

Сегодня используются различные терминологические классификации цервикальных мазков. В связи с получением новых знаний о роли ВПЧ в генезе РШМ с целью повышения эффективности цервикального скрининга для интерпретации цервикальных мазков в большинстве стран мира внедрена терминологическая классификация – система Бетесда (2001 г.). К ее основным терминологическим характеристикам относятся:

  • NILM (Negative for intraepithelial lesion or malignancy) – негативные в отношении интраэпителиального поражения или злокачественности;
  • ASC (Atypical squamous cells) – атипичные клетки плоского эпителия;
  • ASC-US (Atypical squamous cells undertermined significance) – атипичные клетки плоского эпителия неясного значения;
  • ASC-H (Atypical squamous cells cannot exclude HSIL) – атипичные клетки плоского эпителия, не позволяющие исключить поражение эпителия тяжелой степени;
  • LSIL (Low grade squamous cells intraepithelial lesion) – низкая степень плоскоклеточного интраэпителиального поражения;
  • HSIL (High grade squamous cells intraepithelial lesion) – высокая степень плоскоклеточного интраэпителиального поражения;
  • CIS (Carcinoma in situ) – рак in situ.

В настоящее время в мировой литературе широко обсуждается вопрос о роли молекулярно-генетических маркеров канцерогенеза шейки матки. Биомаркеры играют определяющую роль в интерпретации окончательного диагноза при спорных и неоднозначных результатах цитологического исследования и ВПЧ-тестирования.

Известно, что продуктом гена CDKN2A является белок р16 (INK4A) [17, 18], который подавляет активность циклин-зависимых киназ 4 и 6, регулирующих G1-фазу клеточного цикла. Следует отметить, что экспрессия этого белка в нормальных клетках ограничена [19, 20]. Наличие ВПЧ-инфекции приводит к избыточной экспрессии р16. Выявление атипичных клеток плоского эпителия шейки матки, экспрессирующих одновременно р16 и маркер пролиферации Ki67, указывает на индуцированное дисрегулирование клеточного цикла и обеспечивает более точную диагностику поражений высокой степени тяжести.

Обнаружение м-РНК, кодирующей онкопротеины Е6 и Е7 ВПЧ высокого онкогенного риска, является более специфическим предиктором персистирующей инфекции, чем обнаружение ДНК ВПЧ [21, 22]. Специфичность Е6 и Е7 для LSIL составляет 80% [23]. Доказано, что степень тяжести неопластического процесса шейки матки коррелирует с экспрессией онкопротеина Е7 [24].

В последние годы одним из перспективных методов диагностики ВПЧ-ассоциированных поражений шейки матки является определение экспрессии маркеров пролиферации р16 и Ki 67, которые позволяют определить наличие вирусных белков в клетке, а также степень нарушений клеточной регуляции в ответ на персистенцию вируса в клетке. H. Ikenberg и соавт. (2013) обследовали 27 349 женщин из 196 медицинских центров в возрасте от 18 до 65 лет (средний возраст 39,9±11,4 года), которым был проведен цитологический скрининг, ВПЧ-тест и определение экспрессии р16 и Ki67 иммуногистохимическим методом. Пациенткам с аномальными цитологическими мазками и/или положительным ВПЧ-тестом, и/или положительной экспрессией р16 и Ki67 выполнялась расширенная кольпоскопия (n=2301) и прицельная биопсия шейки матки (по показаниям). В биоптатах шейки матки у 205 пациенток была диагностирована CIN II+. Наибольшую чувствительность показала окраска цитологических препаратов двойным иммуноцитохимическим методом по сравнению с мазком, окрашенным гематоксилин-эозином – 86 и 68,5% соответственно (р<0,001), при специфичности – 95,2 и 95,4% соответственно (р=0,15) [25].

В последние годы в зарубежной литературе появилось много публикаций, в которых доказана роль микроРНК в развитии неопластической трансформации. У человека выявлено 2216 зрелых молекул микроРНК, контролирующих функциональную активность более трети генов генома [26]. МикроРНК представляют собой короткие одноцепочечные молекулы длиной 20–25 нуклеотидов, осуществляющие регуляцию экспрессии генов на посттранскрипционном уровне путем ингибирования синтеза белка с мРНК [27]. Многочисленные исследования показали, что повышение или снижение экспрессии определенных микроРНК ассоциируется с развитием предраковых и раковых процессов шейки матки [28, 29]. В исследовании Л.З. Файзуллина и соавт. (2015) показано, что уровень экспрессии микроРНК mir-29b в эпителии шейки матки значительно снижается уже на стадии CIN. При проведении логистического регрессионного анализа ROC-кривой выявлено, что количественное измерение экспрессии mir-29b в эпителии шейки матки позволяет диагностировать неопластические поражения с чувствительностью 70% и специфичностью 72% [26].

Другим немаловажным эпигенетическим маркером прогнозирования неопластических процессов шейки матки является фактор WIF-1 (Wnt inhibitory factor 1). В злокачественных опухолях человека различного происхождения фактор WIF-1 находится в неактивном состоянии. И напротив, экспериментальное восстановление экспрессии WIF-1 в опухолевых клетках приводит к выраженной опухолевой супресcии, уменьшению подвижности опухолевых клеток и снижению их инвазивного и метастатического потенциала на фоне снижения экспрессии маркеров опухолевых стволовых клеток (ОСК). При этом основным механизмом инактивации фактора WIF-1 является промоторное ДНК-метилирование и, как следствие, эпигенетическое выключение кодирующего его гена, происходящее на ранних этапах онкогенеза [30–32]. Полученные данные свидетельствуют о том, что статус метилирования гена, кодирующего фактор WIF-1, может рассматриваться как достоверный диагностический онкомаркер, а также прогностический клинический маркер в процессе комплексного лечения онкологических заболеваний.

Таким образом, последовательное применение ВПЧ-тестирования и/или цитологического исследования с акцентом на результаты ВПЧ-теста и применение новых эпигенетических биомаркеров позволяет выбрать правильную тактику ведения пациенток в сложных клинических ситуациях.

Список литературы

1. HPV Information Centre. Human papillomavirus and related diseases in the world. SummaryReport 2015-04-08.

2. Стерн П.Л., Китченер Г.С., ред. Вакцины для профилактики рака шейки матки. Пер. с англ. Сухих Г.Т., Прилепская В.Н., ред. М.: МЕДпресс-информ; 2011. 192с.

3. Veijalainen O., Tuomisaari S., Luukkaala T., Mäenpää J. High risk HPV testing in the triage of repeat ASC-US and LSIL. Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2015; 94(9): 931-6.

4. Шанин А.А., Решетников О.В. Папилломавирусная инфекция, современный подход: эпидемиология, профилактика и лечение. 2013; 15(5): 16-20.

5. Shipitsyna E., Zolotoverkhaya E., Kuevda D., Nasonova V., Romanyuk T., Khachaturyan A. et al. Prevalence of high-risk human papillomavirus types and cervical squamous intraepithelial lesion in women over 30 years of age in St. Peterburg, Russia. Cancer Epidemiol. 2011; 35(2): 160-4.

6. Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В., ред. Основные показатели состояния онкологической помощи населению Российской Федерации в 2013 г. М.: ФГБУ «МНИОИ им. П. А. Герцена» Минздрава России; 2014. 235с.

7. Ronco G., Dillner J., Elfström K.M., Tunesi S., Snijders P.J., Arbyn M. et al. Efficacy of HPV-based screening for prevention of invasive cervical cancer: follow-up of four European randomized controlled trials. Lancet. 2014; 383(9916): 524-32.

8. Ryu K.J., Lee S., Min K.J., Kim J.W., Hong J.H., Song J.Y. et al. Reflex human papillomavirus test results as an option for the management of Korean women with atypical squamous cells cannot exclude high-grade squamous intraepithelial lesion. Oncologist. 2015; 20(6): 635-9.

9. Stoler M.H., Wright T.C. Jr., Sharma A., Apple R., Gutekunst K., Wright T.L.; ATHENA (Addressing THE Need for Advanced HPV Diagnostics) HPV Study Group. High-risk human papillomavirus testing in women with ASC-US cytology. Results from the ATHENA HPV study. Am. J. Clin. Pathol. 2011; 135(3): 468-75.

10. Saville A.M. Cervical cancer prevention in Australia: Planning for the future. Cancer Cytopathol. 2016; 124(4): 235-40.

11. Stoler M.H., Austin R.M., Zhao C. Point-counterpoint: cervical cancer screening should be done by primary human papillomavirus testing with genotyping and reflex cytology for women over the age of 25 years. J. Clin. Microbiol. 2015; 53(9): 2798-804.

12. Wright T.C., Stoler M.H., Behrens C.M., Sharma A., Zhang G., Wright T.L. Primary cervical cancer screening with human papillomavirus: end of study results from the ATHENA study using HPV as the first-line screening test. Gynecol. Oncol. 2015; 136(2): 189-97.

13. Schiffman M., Boyle S., Raine-Bennett T., Katki H.A., Gage J.C., Wentzensen N. et al. The role of human papillomavirus genotyping in cervical cancer screening: a large-scale evaluation of the cobas HPV test. Cancer Epidemiol. Biomarkers Prev. 2015; 24(9): 1304-10.

14. Wentzensen N., Fetterman B., Castle P.E., Schiffman M., Wood S.N., Stiemerling E. et al. p16/Ki-67 dual stain cytology for detection of cervical precancer in HPV-positive women.  J. Natl. Cancer Inst. 2015; 107(12): djv257.

15. Apgar B.S., Brotzman G.L., Spitzer M. Colposcopy: principles and practice. 2nd ed. Saunders; 2008. 560p.

16. Blatt A.J., Kennedy R., Luff R.D., Austin R.M., Rabin D.S. Comparison of cervical cancer screening results among 256,648 women in multiple clinical practices. Cancer Cytopathol. 2015; 123(5): 282-8

17. Bergeron C., Ordi J., Schmidt D., Trunk M.J., Keller T., Ridder R.; European CINtec Histology Study Group. Conjunctive p16 (INK4a) testing significantly increases accuracy in diagnosing high-grade cervical intraepithelial neoplasia. Am. J. Clin. Pathol. 2010; 133(3): 395-406.

18. del Pino M., Garcia S., Fuste V., Alonso I., Fuste P., Torne A., Ordi J. Value of p16 (INK4a) as a marker of progression/regression in cervical intraepithelial neoplasia grade 1. Am. J. Obstet. Gynecol. 2009; 201(5): 488. el-7.

19. Klaes R., Friedrich T., Spitkovsky D., Ridder R., Rudy W., Petry U. et al. Overexpression of p16 (INK4a) as a specific marker for dysplastic and neoplastic epithelial cells of the cervix uteri. Int. J. Cancer. 2001; 92(2): 276-84.

20. Прилепская В.Н., Байрамова Г.Р., Коган Е.А., Чернова В.Ф., Окушко А.Н. Новые возможности ранней диагностики и профилактики ВПЧ-ассоциированных поражений шейки матки. Медицинский совет. 2015; XX: 72-7.

21. Castle P.E., Dockter J., Giachetti C., Garcia F.A., McCormick M.K., Mitchell A.L. et al. A cross-sectional study of a prototype carcinogenic human papillomavirus E6/E7 messenger RNA assay for detection of cervical precancer and cancer. Clin. Cancer Res. 2007; 13(9): 2599-605.

22. Sotlar K., Stubner A., Diemer D., Menton S., Menton M., Dietz K. et al. Detection of high-risk human papillomavirus E6 and E7 oncogene transcripts in cervical scrapes by nested RT-polymerase chain reaction. J. Med. Virol. 2004; 74(1): 107-16.

23. Karlsen F., Keegan H., McInerney J., Pilkington L., Gronn P., Silva I. et al. Comparison of HPV detection technologies: Hybrid capture 2, PreTect HPV-Proofer and analysis of HPV DNA viral load in HPV16, HPV18 and HPV33 E6/E7 mRNA positive specimens. J. Virol. Methods. 2009; 155(1): 61-6.

24. Белоцерковцева Л.Д., Коваленко Л.В., Лескова С.В. Роль экспрессии онкобелка Е7 в ранней диагностике шейки матки. Медицина и образование в Сибири. 2013; 4: 75.

25. Ikenberg H., Bergeron C., Schmidt D., Griesser H. Screening for cervical cancer precursors with p16/ Ki-67 dual-stained cytology: results of the PALMS study. J. Natl. Cancer Inst. 2013; 105(20): 1550-7.

26. Файзуллин Л.З., Карнаухов В.Н., Мзарелуа Г.М., Чернова В.Ф. Экспрессия микроРНК при цервикальной интраэпителиальной неоплазии и раке шейки матки. Акушерство и гинекология. 2015; 9: 27-32.

27. Filipowicz W., Bhattacharyya S.N., Sonenberg N. Mechanisms of post-transcriptional regulation by microRNAs: are the answers in sight? Nat. Rev. Genet. 2008; 9(2): 102-14.

28. Xu L., Qi X., Duan S., Xie Y., Ren X., Chen G. et al. MicroRNAs: potential biomarkers for disease diagnosis. Biomed. Mater. Eng. 2014; 24(6): 3917-25.

29. Hayes J., Peruzzi P.P., Lawler S. MicroRNAs in cancer: biomarkers, functions and therapy. Trends Mol. Med. 2014; 20(8): 460-9.

30. Ai L., Tao Q., Zhong S., Fields C.R., Kim W.J., Lee M.W. et al. Inactivation of Wnt inhibitory factor-1 (WIF1) expression by epigenetic silencing is a common event in breast cancer. Carcinogenesis. 2006; 27(7): 1341-8.

31. Yee D.S., Tang Y., Li X., Liu Z., Guo Y., Ghaffar S. et al. The Wnt inhibitory factor 1 restoration in prostate cancer cells was associated with reduced tumor growth, decreased capacity of cell migration and invasion and a reversal of epithelial to mesenchymal transition. Mol. Cancer. 2010; 9: 162.

32. Delmas A.L., Riggs B.M., Pardo C.E., Dyer L.M., Darst R.P., Izumchenko E.G. et al. WIF1 is a frequent target for epigenetic silencing in squamous cell carcinoma of the cervix. Carcinogenesis. 2011; 32(11): 1625-33.

Поступила 18.03.2016

Принята в печать 25.03.2016

Об авторах / Для корреспонденции

Байрамова Гюльдана Рауфовна, д.м.н., зав. по клинической работе научно-поликлинического отделения ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (909) 994-77-00. E-mail: bayramova@mail.ru
Файзуллин Леонид Закиевич, к.б.н., в.н.с. лаборатории молекулярно-генетических методов ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (916) 710-67-89. E-mail: l_faizullin@oparina4.ru
Королькова Анна Игоревна, ординатор II года обучения ФГБУ НЦАГиП им. академика В.И. Кулакова Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4. Телефон: 8 (915) 322-08-79. E-mail: zaikinaai@icloud.com
Полозников Андрей Александрович, к.х.н., зав. лабораторией биохимии и энзимологии ФГБУ ФНКЦ ДГОИ им. Дмитрия Рогачева Минздрава России. Адрес: 117997, Россия, Москва, ГСП-7, ул. Саморы Машела, д. 1. Телефон: 8 (495) 287-65-70, доб. 5509. E-mail: andrey.poloznikov@gmail.com
Киселев Всеволод Иванович, д.б.н., профессор, член-корр. РАН, зам. директора Института медико-биологических проблем ФГБУ ВПО РУДН. 115093, Россия, Москва, Подольское ш., д. 8, корп. 5. Телефон: 8 (985) 776-31-16. E-mail: vkis10@mail.ru

Для цитирования: Байрамова Г.Р., Файзуллин Л.З., Королькова А.И., Полозников А.А., Киселев В.И. Скрининг рака шейки матки: что нового в мировой практике. Акушерство и гинекология. 2016; 7: 17-21.
http://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.7.17-21
Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.