Сравнительный анализ липидного состава перитонеальной жидкости и плазмы крови у пациенток с наружным генитальным эндометриозом и миомой матки

1. Адамян Л.В., Андреева Е.Н., Аполихина И.А., Беженарь В.Ф., Геворкян М.А., Гус А.И., Демидов В.Н., Калинина Е.А., Леваков С.А., Марченко Л.А., Попов А.А., Сонова М.М., Хашукова А.З., Чернуха Г.Е., Яроцкая Е.Л. Эндометриоз: диагностика, лечение, реабилитация. Федеральные клинические рекомендации по ведению больных. М.; 2013: 2-9.

2. Щеголев А.И., Быков А.Г., Туманова У.Н., Павлович С.В. Эндометриоз и развитие опухолей. Акушерство и гинекология. 2016; 11: 49-56. http://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.11.49-56

3. Фархат К.Н., Адамян Л.В. Аномалии развития матки и влагалища в сочетании с эндометриозом: тактика ведения и хирургическая коррекция. Акушерство и гинекология. 2016; 5: 96-102. http://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.5.96-102

4. Burney R.O., Giudice L.C. Pathogenesis and pathophysiology of endometriosis. Fertil. Steril. 2012; 98(3): 511-9.

5. Бурлев В.А., Павлович С.В., Ильясова Н.А. Апоптоз и пролиферативная активность в эндометрии при перитонеальном эндометриозе. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2006; 141(2): 165-8.

6. Мельников М.В., Чупрынин В.Д., Аскольская С.В., Хабас Г.Н., Матроницкий Р.Б., Вередченко А.В., Бурыкина П.Н., Попов Ю.В., Хачатрян А.М., Хачатрян А.М., Хилькевич Е.Г. Диагностика и тактика хирургического лечения инфильтративного эндометриоза у пациенток репродуктивного возраста. Акушерство и гинекология. 2012; 7: 42-9.

7. Johnson N.P., Hummelshoj L. World Endometriosis Society Montpellier Consortium. Consensus on current management of endometriosis. Hum. Reprod. 2013; 28(6): 1552-68.

8. Борисова А.В., Стародубцева Н.Л., Козаченко А.В., Чаговец В.В., Салимова Д.Ф., Кононихин А.С., Коган Е.А., Адамян Л.В., Франкевич В.Е., Сухих Г.Т. Исследование очагов эндометриоза различной локализации методом прямой масс-спектрометрии. Акушерство и гинекология. 2016; 9: 101-8. http://dx.doi.org/10.18565/aig.2016.9.101-8

9. Vouk K., Hevir N., Ribic-Pucelj M., Haarpaintner G., Scherb H., Osredkar J. et al. Discovery of phosphatidylcholines and sphingomyelins as biomarkers for ovarian endometriosis. Hum. Reprod. 2012; 27(10):2955-65.

10. Dutta M., Joshi M., Srivastava S., Lodh I., Chakravarty B., Chaudhury K. A metabonomics approach as a means for identification of potential biomarkers for early diagnosis of endometriosis. Mol. Biosyst. 2012: 8(12): 3281-7.

11. Lee Y.H., Tan C.W., Venkatratnam A., Tan C.S., Cui L., Loh S.F. et al. Dysregulated sphingolipid metabolism in endometriosis. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2014; 99(10): 1913-21.

12. Folch J., Lees M., Sloane Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. J. Biol. Chem. 1957; 226(1): 497-509.

13. Trygg J., Wold S. Orthogonal projections to latent structures (O-PLS). J. Chemometrics. 2002; 16(3): 119-28.

14. Sud M., Fahy E., Cotter D., Brown A., Dennis E.A., Glass C.K. et al. LMSD: LIPID MAPS structure database. Nucleic Acid Res. 2007; 35(Database issue): D527-32.

15. Vouk K., Ribič-Pucelj M., Adamski J., Rižner T.L. Altered levels of acylcarnitines, phosphatidylcholines, and sphingomyelins in peritoneal fluid from ovarian endometriosis patients. J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 2016;159: 60-9.

16. Дубинская Е.Д., Федорова Т.А., Лаптева Н.В., Великян О.М. Оксидативный стресс и эндогенная интоксикация у пациенток с бесплодием и перитонеальной формой эндометриоза с учетом полиморфизма гена NAT2. Проблемы репродукции. 2014; 4: 39-44.

17. Лисица А.В., Пономаренко Е.А., Лохов П.Г., Арчаков А.И. Постгеномная медицина: альтернатива биомаркерам. Вестник Российской академии медицинских наук. 2016; 3: 255-60.

18. Угаров Г.С. О роли воды и липидов в организации живой материи. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2015; 5: 443-7.

19. Pavlovic Z., Bakovic M. Regulation of phosphatidylethanolamine homeostasis – The critical role of CTP: phosphoethanolamine cytidylyltransferase (Pcyt2). Int. J. Mol. Sci. 2013; 14(2): 2529-50.

20. Zhu L., Bakovic M. Breast cancer cells adapt to metabolic stress by increasing ethanolamine phospholipid synthesis and CTP: ethanolaminephosphate cytidylyltransferase-Pcyt2 activity. Biochem. Cell Biol. 2012; 90(2): 188-99.

21. Gibellini F., Smith T.K. The Kennedy pathway – de novo synthesis of phosphatidylethanolamine and phosphatidylcholine. IUBMB Life. 2010; 62(6): 414-28.

22. Bleijerveld O.B., Klein W., Vaandrager A.B., Helms J.B., Houweling M. Control of the CDPethanolamine pathway in mammalian cells: Effect of ctp:phosphoethanolamine cytidylyltransferase overexpression and the amount of intracellular diacylglycerol. Biochem. J. 2004; 379(Pt 3): 711-9.

23. Zhu L., Johnson C., Bakovic M. Stimulation of the human CTP: phosphoethanolamine cytidylyltransferase gene by early growth response protein 1. J. Lipid Res. 2008; 49(10): 2197-211.

24. Bhoumik A., Fichtman B., Derossi C., Breitwieser W., Kluger H.M., Davis S. et al. Suppressor role of activating transcription factor 2 (ATF2) in skin cancer. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008; 105(5): 1674-9.

25. Burney R.O., Giudice L.C. Pathogenesis and pathophysiology of endometriosis. Fertil. Steril. 2012; 98(3): 511-9.

26. Burney R.O., Talbi S., Hamilton A.E., Vo K.C., Nyegaard M., Nezhat C.R. et al. Gene expression analysis of endometrium reveals progesterone resistance and candidate susceptibility genes in women with endometriosis, Endocrinology. 2007; 148(8): 3814-26.

27. Corre I., Niaudet C., Paris F. Plasma membrane signaling induced by ionizing radiation. Mutat. Res. 2010; 704(1-3): 61-7.

28. Santulli P., Marcellin L., Noël J.C., Borghese B., Fayt I., Vaiman D. et al. Sphingosine pathway deregulation in endometriotic tissues. Fertil. Steril. 2012; 97(4): 904-11.

29. Santanam N., Fahrmann J., Cook C., King H., Egleton R., Dawley B.L. Oxidized lipoproteins are the alleged pain molecules in the peritoneal fluid of women with endometriosis. Fertil. Steril. 2010; 94(4, Suppl.): S145.

Поступила 10.02.2017

Принята в печать 17.02.2017